Porphyromonas gingivalis由来LPS局所投与が加齢マウスの歯周組織に及ぼす影響

目的 : 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎症のマウスモデルとして改善の余地があると考えられる. さらに実験的歯周炎マウスでは誘発直後に歯周ポケットの形成や骨吸収を認めるものの, その後治癒傾向に転じ, 炎症が慢性経過しないという問題を提起している報告もある. 今回の研究では, 機械的刺激の少ない方法を用いて歯槽骨吸収を惹起させ, 若齢および加齢マウスにおける歯周炎の進行を比較した. 材料と方法 : Porphyromonas gingivalis由来のLPSを8週齢と24週齢のC57BL/6J...

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Published in日本歯科保存学雑誌 Vol. 63; no. 4; pp. 287 - 295
Main Authors 長谷川, 徹, 佐藤, 匠, 辰巳, 順一, 森永, 啓嗣, 北後, 光信, 安田, 忠司, 清水, 雄太, 金山, 圭一
Format Journal Article
LanguageJapanese
Published 特定非営利活動法人 日本歯科保存学会 2020
日本歯科保存学会
Subjects
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ISSN0387-2343
2188-0808
DOI10.11471/shikahozon.63.287

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Abstract 目的 : 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎症のマウスモデルとして改善の余地があると考えられる. さらに実験的歯周炎マウスでは誘発直後に歯周ポケットの形成や骨吸収を認めるものの, その後治癒傾向に転じ, 炎症が慢性経過しないという問題を提起している報告もある. 今回の研究では, 機械的刺激の少ない方法を用いて歯槽骨吸収を惹起させ, 若齢および加齢マウスにおける歯周炎の進行を比較した. 材料と方法 : Porphyromonas gingivalis由来のLPSを8週齢と24週齢のC57BL/6Jマウスの口蓋側歯肉に1週間に2回, 合計12回投与した. LPSは33Gのハミルトンマイクロシリンジを用いて投与され, 1回当たりの投与量は20μgとした. マウスの上顎骨は, 最終投与の1週間後と4週間後に採取した. 上顎軟組織の口腔内画像, 上顎のマイクロCT画像, 上顎組織切片を作製し, 各種染色 (HE染色, TRAP染色) を行い歯周組織の形態を視覚的および組織学的に観察した. 成績 : 口腔内画像では, 肉眼的にマイクロシリンジによるLPSの投与で生じた軟組織の変化 (腫脹, 発赤, 退縮) は認められなかった. マイクロCT画像では, LPS群はSaline群と比較して骨吸収を多く認めた. YoungのLPS群に比べてOldのLPS群は, LPS投与終了1週から4週にかけて骨吸収が継続的に進行していた. HE染色では, OldのLPS群では1週から4週にかけては骨組織の吸収が進行し, OldのLPS群のなかでも特に4w群で多数の炎症性細胞の浸潤を認め, 上皮下結合組織内の炎症が継続していた. TRAP染色では, LPS群はSaline群と比較してTRAP陽性細胞を多く認めた. OldのLPS群は1週より4週でTRAP陽性細胞を多く認めた. 結論 : マイクロシリンジによる歯肉へのLPS投与は, マウス実験的歯周炎モデルとしての可能性が示唆された. 加齢マウスでは若齢マウスと比較して歯槽骨吸収の増加を認め, LPS投与後も継続的に骨吸収が進むことが示された.
AbstractList 「抄録」「目的」: 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎症のマウスモデルとして改善の余地があると考えられる. さらに実験的歯周炎マウスでは誘発直後に歯周ポケットの形成や骨吸収を認めるものの, その後治癒傾向に転じ, 炎症が慢性経過しないという問題を提起している報告もある. 今回の研究では, 機械的刺激の少ない方法を用いて歯槽骨吸収を惹起させ, 若齢および加齢マウスにおける歯周炎の進行を比較した. 「材料と方法」: Porphyromonas gingivalis由来のLPSを8週齢と24週齢のC57BL/6Jマウスの口蓋側歯肉に1週間に2回, 合計12回投与した. LPSは33 Gのハミルトンマイクロシリンジを用いて投与され, 1回当たりの投与量は20μgとした. マウスの上顎骨は, 最終投与の1週間後と4週間後に採取した. 上顎軟組織の口腔内画像, 上顎のマイクロCT画像, 上顎組織切片を作製し, 各種染色(HE染色, TRAP染色)を行い歯周組織の形態を視覚的および組織学的に観察した. 「成績」: 口腔内画像では, 肉眼的にマイクロシリンジによるLPSの投与で生じた軟組織の変化(腫脹, 発赤, 退縮)は認められなかった. マイクロCT画像では, LPS群はSaline群と比較して骨吸収を多く認めた. YoungのLPS群に比べてOldのLPS群は, LPS投与終了1週から4週にかけて骨吸収が継続的に進行していた. HE染色では, OldのLPS群では1週から4週にかけては骨組織の吸収が進行し, OldのLPS群のなかでも特に4w群で多数の炎症性細胞の浸潤を認め, 上皮下結合組織内の炎症が継続していた. TRAP染色では, LPS群はSaline群と比較してTRAP陽性細胞を多く認めた. OldのLPS群は1週より4週でTRAP陽性細胞を多く認めた. 「結論」: マイクロシリンジによる歯肉へのLPS投与は, マウス実験的歯周炎モデルとしての可能性が示唆された. 加齢マウスでは若齢マウスと比較して歯槽骨吸収の増加を認め, LPS投与後も継続的に骨吸収が進むことが示された.
目的 : 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎症のマウスモデルとして改善の余地があると考えられる. さらに実験的歯周炎マウスでは誘発直後に歯周ポケットの形成や骨吸収を認めるものの, その後治癒傾向に転じ, 炎症が慢性経過しないという問題を提起している報告もある. 今回の研究では, 機械的刺激の少ない方法を用いて歯槽骨吸収を惹起させ, 若齢および加齢マウスにおける歯周炎の進行を比較した. 材料と方法 : Porphyromonas gingivalis由来のLPSを8週齢と24週齢のC57BL/6Jマウスの口蓋側歯肉に1週間に2回, 合計12回投与した. LPSは33Gのハミルトンマイクロシリンジを用いて投与され, 1回当たりの投与量は20μgとした. マウスの上顎骨は, 最終投与の1週間後と4週間後に採取した. 上顎軟組織の口腔内画像, 上顎のマイクロCT画像, 上顎組織切片を作製し, 各種染色 (HE染色, TRAP染色) を行い歯周組織の形態を視覚的および組織学的に観察した. 成績 : 口腔内画像では, 肉眼的にマイクロシリンジによるLPSの投与で生じた軟組織の変化 (腫脹, 発赤, 退縮) は認められなかった. マイクロCT画像では, LPS群はSaline群と比較して骨吸収を多く認めた. YoungのLPS群に比べてOldのLPS群は, LPS投与終了1週から4週にかけて骨吸収が継続的に進行していた. HE染色では, OldのLPS群では1週から4週にかけては骨組織の吸収が進行し, OldのLPS群のなかでも特に4w群で多数の炎症性細胞の浸潤を認め, 上皮下結合組織内の炎症が継続していた. TRAP染色では, LPS群はSaline群と比較してTRAP陽性細胞を多く認めた. OldのLPS群は1週より4週でTRAP陽性細胞を多く認めた. 結論 : マイクロシリンジによる歯肉へのLPS投与は, マウス実験的歯周炎モデルとしての可能性が示唆された. 加齢マウスでは若齢マウスと比較して歯槽骨吸収の増加を認め, LPS投与後も継続的に骨吸収が進むことが示された.
Author 清水, 雄太
北後, 光信
辰巳, 順一
金山, 圭一
安田, 忠司
長谷川, 徹
森永, 啓嗣
佐藤, 匠
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Copyright 2020 特定非営利活動法人日本歯科保存学会
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CorporateAuthor 朝日大学歯学部口腔感染医療学講座歯周病学分野
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DOI 10.11471/shikahozon.63.287
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EISSN 2188-0808
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Issue 4
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Publisher 特定非営利活動法人 日本歯科保存学会
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References 4) 臼井通彦, 花谷智哉, 森谷友貴, 佐野孝太朗, 有吉 渉, 西原達次, 中島啓介. 歯周炎における骨破壊メカニズム~破骨細胞を形成・活性化する因子~. 日歯周誌 57 ; 2015 : 120-125.
23) Novak EA, Shao H, Daep CA, Demuth DR. Autoinducer2 and QseC control biofilm formation and in vivo virulence of Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Infect Immun 2010; 78: 2919-2926.
18) de Molon RS, de Avila ED, Boas Nogueira AV, Chaves de Souza JA, Avila-Compos MJ, de Andrade CR, Cirelli JA. Evaluation of the host response in various models of induced periodontal disease in mice. J Periodontol 2014; 85: 465-477.
3) Takayanagi H, Ogasawara K, Hida S, Chiba T, Murata S, Sato K, Takaoka A, Yokochi T, Oda H, Tanaka K, Nakamura K, Taniguchi T. T-cell-mediated regulation of osteoclastogenesis by signaling cross-talk between RANKL and IFN-gamma. Nature 2000; 408: 600-605.
1) Ozaki Y, Ukai T, Yamaguchi M, Yokoyama M, Haro ER, Yoshimoto M, Kaneko T, Yoshinaga M, Nakamura H, Shiraishi C, Hara Y. Locally administered T cells from mice immunized with lipopolysaccharide (LPS) accelerate LPS-induced bone resorption. Bone 2009; 44: 1169-1176.
22) Polak D, Wilnesky A, Shapira L, Halabi A, Goldstein D, Weiss EI, Houri-Haddad Y. Mouse model of experimental periodontitis induced by Polphyromonas gingivalis/Fusobacterium nucleatum infection: bone loss and host response. J Clin Periodontol 2009; 36: 406-410.
29) Hiyari S, Atti E, Camargo PM, Eskin E, Lusis AJ, Tetradis S, Pirih FQ. Heritability of periodontal bone loss in mice. J Periodont Res 2015; 50: 730-736.
13) Breivik T, Opstad PK, Gjermo P, Thrane PS. Effects of hypothalamamic pituitary adrenal axis reactivity on periodontal tissue destruction in rats. J Oral Sci 2000; 108: 115-122.
5) Kikuchi T, Matsuguchi T, Tsuboi N, Mitani A, Tanaka S, Matsuoka M, Yamamoto G, Hishikawa T, Noguchi T, Yoshikai Y. Gene expression is induced by lipopolysaccharide in mouse osteoblasts via Toll-like receptors. J Immunol 2001; 166: 3574-3579.
27) Yamamoto H, Yokoyama M, Tamura H, Okumura S, Kawada E, Kuboyama N. Studies on the effects of protamine reduced peptide for the experimental periodontitis analyzed by microcomputerized tomography. J Hard Tissue Biol 2012; 21: 51-56.
17) Xie R, Kujipers-Jagtman AM, Maltha JC. Inflammatory responses in two commonly used rat models for experimental tooth movement. Comparison with ligature induced periodontitis. Arch Oral Biol 2011; 56: 159-167.
2) Dank L, Takayanagi H. Immunology and bone. J Bio-chem 2013; 154: 29-39.
8) Barton GM, Medzhitov R. Control of adaptive immune responses by Toll-like receptors. Curr Opin Immunol 2002; 14: 380-383.
28) Taguchi H, Aono Y, Kawata T, Asano M, Shimizu N, Saigusa T. Intragingival injection of Porphyromonas gingivalis derived lipopolysaccharide induces a transient increase in gingival tumour necrosis factor-alpha, but not interleukin-6, in anaesthetized rats. J Oral Sci 2015; 7: 155-160.
16) Liu YF, Wu LA, Wang J, Wen LY, Wang XJ. Microcomputerized tomography analysis of alveolar bone loss in ligature and nicotine induced experimental periodontitis in rats. J Periodont Res 2010; 45: 714-719.
14) Niikura K, Takeshita N, Chida N. A novel inhibitor of vacuolar ATPase, FR202126, prevents alveolar bone destruction in experimental periodontitis in rats. J Toxicol Sci 2005; 30: 297-304.
15) Tomofuji T, Ekuni D, Irie K, Azuma T, Endo Y, Tamaki N, Sanbe T, Murakami J, Yamamoto T, Morita M. Preventive effects of a cocoa enriched diet on gingival oxidative stress in experimental periodontitis. J Periodont Res 2009; 80: 1799-1808.
34) 真鍋一郎. 慢性炎症と加齢関連疾患. 日老医誌 2015 ; 54 : 120-125.
31) 山本 仁. 歯周炎実験モデル作製の試み : Novel experimental model for periodontitis. 歯科学報 2014 ; 114 : 104-107.
19) Nakajima K, Hamada N, Takahashi Y, Sasaguri K, Tsukinoki K, Uemoto T, Sato S. Restraint stress enhances alveolar bone loss in an experimental model. J Periodont Res 2006; 41: 527-534.
9) Iwakura Y, Ishigame H. The IL-23/IL-17 axis in inflammation. J Clin Invest 2006; 116: 1218-1222.
36) Shaw AC, Goldstein DR, Montgomery RR. Age dependent dysregulation of innate immunity. Nat Rev Immunol 2013; 13: 875-887.
32) Gross C, Weber M, Creutzburg K, Mobius P, Preidl R, Amann K, Wehrhan F. Osteoclast profile of medication related osteonecrosis of the jaw secondary to bisphosphonate theraphy: a comparison with osteoradionecrosis and osteomyelitis. J Transl Med 2017; 15: 128-141.
33) Liu Y, Fang S, Li X, Feng J, Du J, Guo L, Su Y, Zhou J, Ding G, Bai Y, Wang S, Wang H, Liu Y. Aspirin inhibits LPS induced macrophage activation via the NF-kB pathway. Sci Rep 2017; 7: 11549
21) Kim Y, Hamada M, Takahashi Y, Sasaguri K, Tsukinoki K, Onozuka M, Sato S. Cervical sympathectomy causes alveolar bone loss in an experimental rat model. J Periodont Res 2009; 44: 695-703.
30) Jin Baek K, Choi YS, Kanq CK, Choi Y. The proteolytic activity of Porphyromonas gingivalis is critical in a murine model of periodontitis. J Periodontol 2017; 88: 218-224.
12) Saadi-Thiers K, Huck O, Simonis P, Tilly P, Fabre JE, Tenenbaum H, Davideau JL. Periodontal, and systemic responses in various mice models of experimental periodontitis: respective roles of inflammation duration and Porphyromonas gingivalis infection. J Periodontol 2013; 84: 396-406.
11) Nakatsu S, Yoshinaga Y, Kuramoto A, Nagano F, Ichimura I, Oshino K, Yoshimura A, Yano Y, Hara Y. Occulusal trauma accelerates attachment loss at the onset of experimental periodontitis in rats. J Periodont Res 2014; 49: 314-322.
20) Kesavalu L, Sathishkumar S, Bakthavatchalu V, Matthews C, Dawson D, Steffen M, Ebersole J. Rat model of polymicrobial infection, immunity and alveolar bone resorption in periodontal disease. Infect Immun 2007; 75: 1704-1712.
6) Hajishengallis G, Lambris JD. Complement and dysbiosis in periodontal disease. J Immunobiol 2012; 217: 1111-1116.
25) Nakajima M, Arimatsu K, Kato T, Matsuda Y, Minagawa T, Takahashi N, Ohno H, Yamazaki K. Oral administration of P. gingivalis induces dysbiosis of gut microbiota and impaired barrier function leading to dissemination of enterobacteria to the liver. PLos One 2015; 10: e0134-0234.
26) Arimatsu K, Yamada H, Miyazawa H, Minagawa T, Nakajima M, Mark IR, Gotoh K, Motooka D, Nakamura S, Iida T, Yamazaki K. Oral pathobiont induces systemic inflammation and metabolic changes associated with alteration of gut microbiota. Sci Rep 2014; 4: 4828.
10) Kuramoto A, Yoshinaga Y, Kaneko T, Ukai T, Shiraishi C, Oshino K, Ichimura I, Hara H. The formation of immune complexes is involved in the acute phase of periodontal destruction in rats. J Periodont Res 2012; 47: 455-462.
37) Suda K, Woo JT, Takami M, Sexton PM, Nagai K. Lipopolysaccharide supports survival and fusion of preoseoclasts independent of TFN-alpha, IL-1, and RANKL. J Cell Physiol 2002; 190: 101-108.
35) Wu Y, Dong G, Xiao W, Miao F, Syverson A, Missaghian N, Vafa R, Cabrera-Ortega AA, Rossa C, Graves GT. Effect of aging on periodontal inflammation, microbial colonization and disease susceptibility. J Dent Res 2016; 95: 460-466.
24) Cantley MD, Haynes DR, Marino V, Bartold PM. Preexiting periodontitis exacerbates experimental arthritis in a mouse model. J Clin Periodontol 2011; 38: 532-541.
7) Yamamoto M, Sato S, Mori K, Hoshino K, Takeuchi O, Takeda K, Akira S. Cutting edge: a novel Toll/IL-1 receptor domain containing adapter that preferentially activates the IFN-beta promoter in the Toll-like receptor signaling. J Immunol 2002; 169: 6668-6672.
References_xml – reference: 17) Xie R, Kujipers-Jagtman AM, Maltha JC. Inflammatory responses in two commonly used rat models for experimental tooth movement. Comparison with ligature induced periodontitis. Arch Oral Biol 2011; 56: 159-167.
– reference: 36) Shaw AC, Goldstein DR, Montgomery RR. Age dependent dysregulation of innate immunity. Nat Rev Immunol 2013; 13: 875-887.
– reference: 6) Hajishengallis G, Lambris JD. Complement and dysbiosis in periodontal disease. J Immunobiol 2012; 217: 1111-1116.
– reference: 12) Saadi-Thiers K, Huck O, Simonis P, Tilly P, Fabre JE, Tenenbaum H, Davideau JL. Periodontal, and systemic responses in various mice models of experimental periodontitis: respective roles of inflammation duration and Porphyromonas gingivalis infection. J Periodontol 2013; 84: 396-406.
– reference: 35) Wu Y, Dong G, Xiao W, Miao F, Syverson A, Missaghian N, Vafa R, Cabrera-Ortega AA, Rossa C, Graves GT. Effect of aging on periodontal inflammation, microbial colonization and disease susceptibility. J Dent Res 2016; 95: 460-466.
– reference: 20) Kesavalu L, Sathishkumar S, Bakthavatchalu V, Matthews C, Dawson D, Steffen M, Ebersole J. Rat model of polymicrobial infection, immunity and alveolar bone resorption in periodontal disease. Infect Immun 2007; 75: 1704-1712.
– reference: 9) Iwakura Y, Ishigame H. The IL-23/IL-17 axis in inflammation. J Clin Invest 2006; 116: 1218-1222.
– reference: 18) de Molon RS, de Avila ED, Boas Nogueira AV, Chaves de Souza JA, Avila-Compos MJ, de Andrade CR, Cirelli JA. Evaluation of the host response in various models of induced periodontal disease in mice. J Periodontol 2014; 85: 465-477.
– reference: 33) Liu Y, Fang S, Li X, Feng J, Du J, Guo L, Su Y, Zhou J, Ding G, Bai Y, Wang S, Wang H, Liu Y. Aspirin inhibits LPS induced macrophage activation via the NF-kB pathway. Sci Rep 2017; 7: 11549
– reference: 13) Breivik T, Opstad PK, Gjermo P, Thrane PS. Effects of hypothalamamic pituitary adrenal axis reactivity on periodontal tissue destruction in rats. J Oral Sci 2000; 108: 115-122.
– reference: 4) 臼井通彦, 花谷智哉, 森谷友貴, 佐野孝太朗, 有吉 渉, 西原達次, 中島啓介. 歯周炎における骨破壊メカニズム~破骨細胞を形成・活性化する因子~. 日歯周誌 57 ; 2015 : 120-125.
– reference: 2) Dank L, Takayanagi H. Immunology and bone. J Bio-chem 2013; 154: 29-39.
– reference: 5) Kikuchi T, Matsuguchi T, Tsuboi N, Mitani A, Tanaka S, Matsuoka M, Yamamoto G, Hishikawa T, Noguchi T, Yoshikai Y. Gene expression is induced by lipopolysaccharide in mouse osteoblasts via Toll-like receptors. J Immunol 2001; 166: 3574-3579.
– reference: 25) Nakajima M, Arimatsu K, Kato T, Matsuda Y, Minagawa T, Takahashi N, Ohno H, Yamazaki K. Oral administration of P. gingivalis induces dysbiosis of gut microbiota and impaired barrier function leading to dissemination of enterobacteria to the liver. PLos One 2015; 10: e0134-0234.
– reference: 37) Suda K, Woo JT, Takami M, Sexton PM, Nagai K. Lipopolysaccharide supports survival and fusion of preoseoclasts independent of TFN-alpha, IL-1, and RANKL. J Cell Physiol 2002; 190: 101-108.
– reference: 22) Polak D, Wilnesky A, Shapira L, Halabi A, Goldstein D, Weiss EI, Houri-Haddad Y. Mouse model of experimental periodontitis induced by Polphyromonas gingivalis/Fusobacterium nucleatum infection: bone loss and host response. J Clin Periodontol 2009; 36: 406-410.
– reference: 34) 真鍋一郎. 慢性炎症と加齢関連疾患. 日老医誌 2015 ; 54 : 120-125.
– reference: 19) Nakajima K, Hamada N, Takahashi Y, Sasaguri K, Tsukinoki K, Uemoto T, Sato S. Restraint stress enhances alveolar bone loss in an experimental model. J Periodont Res 2006; 41: 527-534.
– reference: 30) Jin Baek K, Choi YS, Kanq CK, Choi Y. The proteolytic activity of Porphyromonas gingivalis is critical in a murine model of periodontitis. J Periodontol 2017; 88: 218-224.
– reference: 14) Niikura K, Takeshita N, Chida N. A novel inhibitor of vacuolar ATPase, FR202126, prevents alveolar bone destruction in experimental periodontitis in rats. J Toxicol Sci 2005; 30: 297-304.
– reference: 27) Yamamoto H, Yokoyama M, Tamura H, Okumura S, Kawada E, Kuboyama N. Studies on the effects of protamine reduced peptide for the experimental periodontitis analyzed by microcomputerized tomography. J Hard Tissue Biol 2012; 21: 51-56.
– reference: 16) Liu YF, Wu LA, Wang J, Wen LY, Wang XJ. Microcomputerized tomography analysis of alveolar bone loss in ligature and nicotine induced experimental periodontitis in rats. J Periodont Res 2010; 45: 714-719.
– reference: 21) Kim Y, Hamada M, Takahashi Y, Sasaguri K, Tsukinoki K, Onozuka M, Sato S. Cervical sympathectomy causes alveolar bone loss in an experimental rat model. J Periodont Res 2009; 44: 695-703.
– reference: 24) Cantley MD, Haynes DR, Marino V, Bartold PM. Preexiting periodontitis exacerbates experimental arthritis in a mouse model. J Clin Periodontol 2011; 38: 532-541.
– reference: 3) Takayanagi H, Ogasawara K, Hida S, Chiba T, Murata S, Sato K, Takaoka A, Yokochi T, Oda H, Tanaka K, Nakamura K, Taniguchi T. T-cell-mediated regulation of osteoclastogenesis by signaling cross-talk between RANKL and IFN-gamma. Nature 2000; 408: 600-605.
– reference: 23) Novak EA, Shao H, Daep CA, Demuth DR. Autoinducer2 and QseC control biofilm formation and in vivo virulence of Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Infect Immun 2010; 78: 2919-2926.
– reference: 8) Barton GM, Medzhitov R. Control of adaptive immune responses by Toll-like receptors. Curr Opin Immunol 2002; 14: 380-383.
– reference: 11) Nakatsu S, Yoshinaga Y, Kuramoto A, Nagano F, Ichimura I, Oshino K, Yoshimura A, Yano Y, Hara Y. Occulusal trauma accelerates attachment loss at the onset of experimental periodontitis in rats. J Periodont Res 2014; 49: 314-322.
– reference: 28) Taguchi H, Aono Y, Kawata T, Asano M, Shimizu N, Saigusa T. Intragingival injection of Porphyromonas gingivalis derived lipopolysaccharide induces a transient increase in gingival tumour necrosis factor-alpha, but not interleukin-6, in anaesthetized rats. J Oral Sci 2015; 7: 155-160.
– reference: 26) Arimatsu K, Yamada H, Miyazawa H, Minagawa T, Nakajima M, Mark IR, Gotoh K, Motooka D, Nakamura S, Iida T, Yamazaki K. Oral pathobiont induces systemic inflammation and metabolic changes associated with alteration of gut microbiota. Sci Rep 2014; 4: 4828.
– reference: 7) Yamamoto M, Sato S, Mori K, Hoshino K, Takeuchi O, Takeda K, Akira S. Cutting edge: a novel Toll/IL-1 receptor domain containing adapter that preferentially activates the IFN-beta promoter in the Toll-like receptor signaling. J Immunol 2002; 169: 6668-6672.
– reference: 31) 山本 仁. 歯周炎実験モデル作製の試み : Novel experimental model for periodontitis. 歯科学報 2014 ; 114 : 104-107.
– reference: 10) Kuramoto A, Yoshinaga Y, Kaneko T, Ukai T, Shiraishi C, Oshino K, Ichimura I, Hara H. The formation of immune complexes is involved in the acute phase of periodontal destruction in rats. J Periodont Res 2012; 47: 455-462.
– reference: 29) Hiyari S, Atti E, Camargo PM, Eskin E, Lusis AJ, Tetradis S, Pirih FQ. Heritability of periodontal bone loss in mice. J Periodont Res 2015; 50: 730-736.
– reference: 32) Gross C, Weber M, Creutzburg K, Mobius P, Preidl R, Amann K, Wehrhan F. Osteoclast profile of medication related osteonecrosis of the jaw secondary to bisphosphonate theraphy: a comparison with osteoradionecrosis and osteomyelitis. J Transl Med 2017; 15: 128-141.
– reference: 1) Ozaki Y, Ukai T, Yamaguchi M, Yokoyama M, Haro ER, Yoshimoto M, Kaneko T, Yoshinaga M, Nakamura H, Shiraishi C, Hara Y. Locally administered T cells from mice immunized with lipopolysaccharide (LPS) accelerate LPS-induced bone resorption. Bone 2009; 44: 1169-1176.
– reference: 15) Tomofuji T, Ekuni D, Irie K, Azuma T, Endo Y, Tamaki N, Sanbe T, Murakami J, Yamamoto T, Morita M. Preventive effects of a cocoa enriched diet on gingival oxidative stress in experimental periodontitis. J Periodont Res 2009; 80: 1799-1808.
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Snippet 目的 : 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎症のマウスモデルとして改...
「抄録」「目的」: 歯周炎は慢性炎症による歯槽骨吸収を主な症状としている. 従来の歯周炎マウスモデルは, 炎症を惹起させる方法や観察期間において, 慢性炎...
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SubjectTerms LPS
マイクロシリンジ
加齢マウス
Title Porphyromonas gingivalis由来LPS局所投与が加齢マウスの歯周組織に及ぼす影響
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